凝膠法常用的方法有三種，即試管法、玻片法及毛細吸管法。

1. 試管法

將等量的被檢樣品與鱟試劑加入試管，混勻，放入水浴中讓其充分反應，然后取出觀察凝膠形成的情況。實驗時共需作四種試管，即試驗管、陽性對照管、陰性對照管及陰性抑制對照管。

試驗管：取標本0.1ml+鱟試劑0.1ml。一般的標本如水、注射液等，實驗前不須加以處理，但血液及腹腔滲出液等實驗前必須加以處理，因為在這些標本中可能會有LT（Limulus test，鱟試劑法）反應的抑制物質(zhì)。應用的鱟試劑應事前以標準內(nèi)毒素進行標定，并認為是可用的。

陽性對照管:標準內(nèi)毒素0.1ml+鱟試劑0.1ml。標準內(nèi)毒素用前應以WHO標準品標定。所用的內(nèi)毒素濃度按鱟試劑的敏感性而定，一般為1～5 ng/ ml。

陰性對照管:無熱原水0.1ml+鱟試劑0.1ml。

抑制對照管:標本0.1ml＋標準內(nèi)毒素0.1ml+鱟試劑0.2ml。

上述四管均放入37℃孵育1～2小時觀察結果。如形成凝膠堅固，試管倒轉180度不變形，則記為（++）；如混濁度和粘滯性明顯增加，呈膠體狀，但傾斜試管時變形，則記為（+）；如液體流動自如，透明無變化或稍混濁，有少量顆粒細絮片狀物，則記為（-）。

如被檢樣品中有抑制物存在，則可將檢品作適當?shù)南♂尰蚪?jīng)各種處理以除去抑制物，再次測試。如這些方法無效，亦可采用其它內(nèi)毒素檢測法，如RT（Rabbit pyrogen test，家兔熱原實驗）法。

2. 玻片法

鑒于試管法耗費鱟試劑量多，結果判定不易標準化，需用時間較長等缺點，Frauch于1974年首先創(chuàng)用了玻片法。將10μl鱟試劑與已處理過的被檢樣品10μl滴于無菌無熱原的玻片上，充分混勻，水平放置37℃30分鐘，取出觀察結果。如標本中含有內(nèi)毒素，則混合物形成凝膠，倒轉玻片時混合物不流動，觸之較結實。反之則說明樣本中不含內(nèi)毒素或內(nèi)毒素含量過低。

Goto等于1977年對此法進行了兩點改進。①增加鱟試劑及樣品的量，所用量各為20μl。由于Frauch法僅用10μl的鱟試劑及10μl的被檢標本，量太少，且形成凝膠后其體積更小，不易判斷結果。故各增加鱟試劑及被檢標本量1倍，這樣結果判定更正確、容易些。②使用不含硅的玻片。由于硅玻璃組成的玻片，滴加在其上的液體可向四周擴散，而顯得不規(guī)則。不含硅的玻片可使滴加在其上的液體保持穩(wěn)定，不向四周擴散，這樣，為結果的判斷提取了方便。

3. 毛細吸管法

此法由瑞典學者Gardi于1980年首先創(chuàng)用。將10μl被檢標與10μl鱟試劑滴于無菌無熱原的載玻片上，充分混勻，然后以毛細吸管吸入其內(nèi)（一般為2/3的高度），水平37℃孵育45-60分鐘，取出毛細吸管，再浸入溴酚染料中2～3秒鐘，取出即可判斷結果。如染料能進入毛細吸管，則說明樣品中無內(nèi)毒素或所含的內(nèi)毒素量低于鱟試劑檢測的敏感度記為（-）；如有堅固凝膠形成以致染色不能浸入，即說明樣本含有內(nèi)毒素，記為（+）。此法敏感性高、操作簡便、所需試劑量少、孵育時間短，結果判斷較客觀。

我們實驗室于1982-1983年間應用毛細吸管微量測定法對臨床的多種標本進行了內(nèi)毒素檢測，結果較為滿意，認為此法值得在臨床上廣泛推廣。

目前，日本已有專門的內(nèi)毒素微量檢測管出售，這種毛細吸管內(nèi)已裝有微量的凍干鱟試劑，只需將此管插入液相標本，取出孵育一定的時間后即能判斷結果。